PHACUS Sp. ( ou pas ...)

[YVES22]

bonjour à tous.
un seul exemplaire en liquide glycériné provenant d'un étang local.
OK, j'admets; le cliché n'est pas terrible, je me suis trop intéressé à la paroi mais on fera mieux la prochaine fois...
A première vue je pensais PHACUS helicoides mais en parcourant un peu les pages du JOHN je tombe sur MONOMORPHINA dont le description conviendrait mieux - et peut-être MONOMORPHINA pyrum ( = PHACUS pyrum / = LEPOCINCLIS pyrum !)
La taille correspond ; Le chloroplaste semble en effet pariétal - difficile de dire où sont le ou les paramylons - l'appendice caudal est hyalin, long et plutôt pointu ( au moins sur le premier cliché ) ??
Bon; d'autres idées

phacus_sp13.jpg (116.43 Kio) Vu 3553 fois

le deuxième cliché est un stacking de 6 photos

phacus_sp14.jpg (153.59 Kio) Vu 3552 fois

[YVES50]

Bonjour Yves,
C'est vrai que M. pyrum des images du dvd de JOHN & al. ressemble bien à ton spécimen.
Cependant, c'est bien difficile de l'affirmer : tes clichés sont franchement surexposés
C'est à croire que se sont les chloroplastes qui sont rubanés et spiralés. JOHN dessine bien cependant des chloroplastes discoïdes et petits.
Bref, je ne sais pas

[YVES50]

ps. comme ça vient, Yves...

à croire que se sont les chloroplastes qui sont rubanés et spiralés. JOHN dessine bien cependant des chloroplastes discoïdes et petits.

Mais il est vrai que ta prép. est au liquide glycériné.

Est-ce un mélange alcool-glycérine ou eau-glycérine que tu emploies ?

Si ce "médium" est très bien pour la netteté des contours, il "racrapote" les contenus cellulaires à tel point que pour certaines espèces, les parois cellulosiques se déforment (j'en ai fait les frais avec des spirogyres récemment).
Le produit est donc "bien et pas bien"

J'en appelle donc aux biochimistes du forum. Quel médium très réfringent peut-on utiliser en algologie sans avoir ce souci de déshydratation des cellules avec tous les problèmes subséquents de déformation et de concentration bête du contenu cellulaire ?

[YVES22]

Bonjour Yves. J'utilise de l'eau glycérinée ( sur tes conseils ) ; peut-être même un peu trop fréquemment maintenant mais si on veut faire des bons "empilements" sans que ça bouge..... C'est dommage pour les closterium et les algues filamenteuses, mais ça permet quand même de voir des détails de surface intéressants. Et rien n'empêche de doubler par une lame sans préparation si je vois quelque chose qui m'attire l'oeil !
Peut-être que mon mélange est un peu trop glycériné ? J'avais fait du 50/50 que j'ai redilué par la suite, donc je ne sais plus très bien la concentration
Bon, j'espère retrouver un de ses congénères ; le prélèvement est encore au frigo mais tu sais très bien que, sur un bocal, la bestiole est peut-être la seule !!!! Je ne sais comment ils arrivent à se reproduire , je n'ai pas encore entendu le brâme du phacus au fond du pot .

Utilisateur nomade (via mobile device)

[YVES50]

rien n'empêche de doubler par une lame sans préparation si je vois quelque chose qui m'attire l'oeil

C'est vrai. Je commence toujours par des préparations à l'eau de l'échantillon.

[YVES22]

Bonjour.
Décidemment... pas beaucoup de chance avec les PHACUS ( ou monomorphina ) pyrum; difficulté de mise au point vraisemblement due aux membranes spiralées hyaline qui parcourent la cellule. c'est beaucoup plus évident sous l'oculaire que sur les clichés. Idem pour le flagelle, "tortilloné" et très mobile !
Peut-être des clichés en DIC seraient plus parlants ? mais pour l'instant, j'ai pas ...

Donc 2 clichés 40x - dans l'eau:

phacus_pyrum2.jpg (111.09 Kio) Vu 3359 fois

phacus_pyrum1.jpg (107.83 Kio) Vu 3361 fois