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Bonjour à tous
L'observation d'une goutte de sang entre lame et lamelle a mis en évidence entre les globules rouges de petites formations rondes échinulées plus petites que les hématies ayant un diamètre de 4 à 5µm .
Elles ne sont pas fréquentes mais bien présentes sur les lames .
A votre avis, sont- ce des plaquettes ?
En fond clair lumière oblique :
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En contraste de phase :
sang_humain.jpg22.jpg (191.42 Kio) Vu 9290 fois
En DIC :
sang_humain.jpg3.jpg (133.67 Kio) Vu 9292 fois
Une vue sur des filaments se trouvant dans les lacunes entre les hématies : pourrait-il s'agir de filaments de fibrine ?
sang_humain.jpg4.jpg (212.56 Kio) Vu 9289 fois
Les premières photos sont des observations faites peu après la confection de la lame, les dernières quelques heures après.
Amicalement
André Advocat Logiciels:Microcartouche outil indispensable développé par Christian Aubert,Photoshop,Neatimage,Helicon
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André a écrit :Bonjour à tous
L'observation d'une goutte de sang entre lame et lamelle a mis en évidence entre les globules rouges de petites formations rondes échinulées plus petites que les hématies ayant un diamètre de 4 à 5µm .
Elles ne sont pas fréquentes mais bien présentes sur les lames .
A votre avis, sont- ce des plaquettes ?
Non je ne pense pas, je pense plutôt à des globules rouges hypotoniques. Mais pourquoi seuls certains le sont alors qu'ils sont tous dans la même solution, ça je ne sais pas.
Olivier
Appareil photo : Sony alpha 350 avec Sigma EX 50mm F2.8 DG Macro, Sony Nex 5N. Microscope : Leitz Diaplan et Leitz Dialux 20 EB (obj. x4 /0.10 plan, x10 /0.30 NPL Fluotar, x25 /0.60 PL Fluotar, x40 /0.70 NPL Fluotar, x100 /1.32 NPL Fluotar) Stéréomicroscope : Wild M5A
ce sont des leucocytes avec des pseudopodes en étoile ,macrophages.
Sans caractère pathologique...
Habituellement on examine le sang par frottis, coloré ensuite au Giemsa , ce qui change totalement l'aspect par comparaison a l'examen frais et qui permets une caractérisation de chaque leucocyte.
Filaments de fibrine ?
Oui, André, c'est un réseau de fibrine qui se forme pour commencer la coagulation. https://sites.google.com/site/ocmicrore ... nets-trees
Il ne s'agit pas de filaments de mycélium de champignons comme l'affirme une certaine méthode de diagnostic alternatif.
Ces filaments sont bien visibles en noir avec le CP et apparaissent en blanc avec le fond noir (sauf erreur).
Soit des échinocytes, soit des acanthocytes, au vu du nombre de spicules je pencherais pour des échinocytes.
En aucun cas des macrophages (ils seraient nucléés), et une hématie c'est 7µm, un macrophage 20 à 60 µm.
André, je reviens pour dire que simplement le sang ne s'observe JAMAIS entre lame et lamelle. Toujours sur frottis.
La goutte de sang fraîche sur la lame, la lamelle à 45° d'inclinaison et l'on tire en UNE fois pour étaler ... et pour ne pas avoir les "trains d'hématies" que l'on voit sur ton échantillon ; le frottis est "monocellulaire". On agite pour faire sécher au plus vite.
A partir de là, soit on veut observer tel quel et on fixe simplement à l'éthanol pur, soit on fait un un May-Grünwald-Giemsa.
Dans tous les cas l'examen se fait en immersion SANS LAMELLE.
Soit des échinocytes, soit des acanthocytes, au vu du nombre de spicules je pencherais pour des échinocytes.
En aucun cas des macrophages (ils seraient nucléés), et une hématie c'est 7µm, un macrophage 20 à 60 µm.
Pour les expliquer, il y a soit des artefacts, ce qui est le plus probable et dans ce cas il faudrait détailler le processus d'observation.
De toute façon sous lamelle, c'est rédhibitoire
Ou envisager un certain nombre de pathologies possibles, mais là il faudrait du comptage sur lames ad-hoc et une technique de frottis adéquate.
Si baguette voulait bien me donner un complément d'information...
Dans tous les cas l'examen se fait en immersion SANS LAMELLE.
En immersion, ça veut dire utiliser l'objectif 100 x, celui qui s'utilise avec une huile. Mais SANS LAMELLE, ça veut dire plonger l'objectif dans la préparation ?
Ben manifestement, tu n'as jamais fait d'hématologie.
On fait le frottis, on le fixe à 'alcool, on le colore ou on ne le colore pas, on fait sécher.
On ne met SURTOUT PAS de lamelle.
On met une goutte d'huile (de cèdre ou synthétique, au choix) DIRECTEMENT sur le frottis, et l'on observe.
Pour le "on agite" pour faire sécher au plus vite, c'est au niveau de la fixation, autrement dit au moment de la réalisation du frottis.
Si c'est sec, on ne saurait plus immerger...
Là, tu as franchement atteint et largement dépassé le seuil de ton incompétence, désolé, mais trop, c'est trop.
C'est vrai, je suis peut être méchant. OK
Si vous le désirez, je puis mettre en ligne la réalisation d'une ponction, d'un frottis, de la fixation, de la coloration et de l'observation.
Il est vrai que je m'énerve vite et que ce qui me paraît évident ne l'est pas nécessairement.
Donc, GeLe, je te présentes mes excuses pour mon énervement ou mon "incourtoisie" (je viens de le pondre celui-là).
Curieusement j'ai fait la même chose qu'André il y a quelques jours (avant de lire la méthode !)et j'ai été pareillement intrigué par ces cellules échinulées...
Homo sapiens-sangSC 01-01 2017-LG.jpg (95.83 Kio) Vu 9215 fois
Amicalement
Sylvain
Bestiolomane-plantophile
Bino Olympus SZIII + Paralux L3000 trino pour macro + Diaplan trino + Panasonic G5
† Sylvain nous a quittés le 23 mars 2025 après des années de lutte courageuse contre la maladie. viewtopic.php?t=28050
