Le Naturaliste

Daniel, Frédéric,
Je vais sur place demain matin pour plus de prélèvements avec mon collègue découvreur du site :
OK, même chose que pour Alain : si vous voulez des prélèvements frais, précisez sur mp.
Daniel : pour le milieu de culture, voir le site de l'université de Coimbra (Portugal) tape ACOI et cherche le genre et l'espèce...

Fred. "(tu parlais de Coléo... quel genre ?)"

Il s'agit de curcus : Rhinoncus bruchoides Hbst. (2004), Nanophyes gracilis Redt. (2004) sur Peplis portula, présent sur le site, Nanophyes globulus Germar (2004 encore) aussi sur Peplis portula.
Voilà.

Yves[/color]

Hello

Juste une image pour dire que les Closterium d'Yves sont bien arrivés


(éclairage oblique - objectif 10x - stack d'une dizaine d'images... il manque les apex )

J'espère que d'ici ce week-end, ils seront encore en état pour d'autres séances photo.
Des idées pour les conserver ?
au frigo ?
à la lumière ?
avec un bulleur ?
un peu d'engrais liquide ?

Bonjour,
je n'avais pas donné suite peu avant les vacances de la Toussaint.
Je me demande si la mise en culture permettra une longue survie. C'est à expérimenter.
Cela devrait durer au moins quelques jours simplement à la lumière dans l'eau de prélèvement.
Ensuite, il faudra complèter le milieu de culture.
A long terme, faudra t il faire des repiquages sur un milieu renouvellé?

Mais l'image de FRed me donne envie de faire mes propres clichés.

Et Yves m'a incité à les montrer à des élèves. Je pourrais le faire dans un atelier pour une seconde comme exemple de cellule originale (type d'une desmidiée) à comparer aux classiques épiderme d'oignon ou feuille d'élodée lors de la rentrée.
Je vais lui envoyer mon adresse et lui demander si c'est possible un envoi le 3 4 pour un TP le lundi 7.

Après pour la culture, l'aide de labo pourra faire du KNOP, je ne sais pas si je pourrais demander un milieu plus sophistiqué comme ceux préconisés à Coimbra.

Fredlab:
Des idées pour les conserver ?
au frigo ?
à la lumière ?
avec un bulleur ?
un peu d'engrais liquide ?

Pour les CONSERVER
A température ambiante 18/20°C, minimum 4000 Lux, un bulleur risque de trop débiter sauf quant à partager le débit sur plusieurs culture. On évite de dépasser quelques bulles/minute.
Surtout pas d'engrais liquide chimique, le pH va dériver.

Pour les CULTIVER
Personnellement, je ne travaille qu'avec des extraits de sol, éventuellement enrichis en fer ou vitamines du groupe B pour certaines algues (les Volvox par exemple), quitte à limiter les variétés cultivables.
Des sols bien humifères (avec ses cadavres de micro-animaux) exempts de pesticides et d'herbicides, et de tout épendage d'engrais chimiques récent.
On bouille doucement 3 fois 3 heures (tindallisation) dans de la Volvic, on laisse refroidir et on filtre ...
Un pH acide est généré grâce à un ajout de tourbe lors de l'infusion. Et elles aimes ça !

PS: j'avais fait ouvrir par Christian une rubrique consacrée exclusivement aux mise en culture, mais c'est un peu complexe. Il devient rapidement indispensable de mesurer pH, conductivité, l'insolation artificielle et cela parfois TRES précisemment, le calcium, filtrer l'air, protéger des UV... Gérer les additifs etc.

Bonsoir,
Il s'agit encore de l'ancien prélèvement.
La structure des pyrénoïdes est très classique, pluri-lobée. La coloration au Lugol montre bien qu'il s'agit d'une couronne de grains d'amidon typique. Le corpuscule central est par contre totalement masqué.
Cette structure me rappelle les dessins des microscopistes des années 60-80 montrant l'organite central et la couronne de grains d'amidon synthétisé. Cordialement

Yves[/color]

Hello

Bon, j'en apprends un peu plus sur Closterium.
Les pyrénoïdes seraient des grains d'amidon ?
(ou contiennent des grains d'amidon ?)
Ce sont des organites mobiles ?
Sinon, vous avez une idée sur la localisation du noyau ?

Petite contribution supplémentaire



Stack avec une dizaine d'images, prises cette fois-ci en lumière "normale".
(en taille originale ICI)

Je me suis aussi fendu d'un panorama, assemblage de 5 images... chaque image étant issue d'un processus de stacking.
Aucun de mes softs d'assemblage de pano n'en a voulu.
J'ai monté ça à la main avec toshop


(l'original fait 13000 pixels de large - en taille réduite à 50% ICI... il y a quand même une zone qui ne va pas bien à droite... j'ai merdouillé quelque part au moment de la constitution des piles - enfin, le machin est encore vivant... il bouge...)

je préfère aussi cet envoi plus dense au précédant.

Pour la localisation du noyau des desmidiées, je te renvoie à la page que j'ai créé sur wikipedia!
http://fr.wikipedia.org/wiki/Desmidi%C3%A9es

Je ne pense pas que les pyrénoides bougent plus que le reste du cytoplasme par des mouvements de cyclose.

Le pano est très réussi. Bravo pour avoir fait disparaitre les raccords manuellement.