Closterium tumidum à confirmer

[Buteo]

Merci André,
dans les mêmes prélèvements je trouve pas mal de petits Closterium qui ressemblent mais n'ont pas cette amorce de "brioche" qu'arbore le specimen que j'ai posté.
@+
Philippe

[André]

Pourrais-tu nous en poster ?

[Buteo]

Bjr,
en voilà deux.
Je vais poursuivre mes recherches. Ces deux là je n'ai pas eu le temps de les déterminer. J'ai le sentiment qu'ils n'appartiennent pas à la même espèce, seule la taille est proche. Les angles ne sont pas les mêmes.
Anyway, les v'là :

46-47-FdM-WEB.jpg (135.59 Kio) Vu 3431 fois

[André]

Bonjour Philippe

J'ai bien l'impression, surtout la dernière' que nous sommes en présence de la même espèce, ce qui signifierait que la population est assez stable ....
La seconde a un air de C.abruptum var.
N'as-tu pas d'espèces vidées dans ton prélèvement qui semble bien âgé à présent : pour changer de direction il faudrait des stries d'accroissement dont le tout premier spécimen me semble pourvu.

[Buteo]

Bonjour André,

il n'est qu'à demander mon prince !
À défaut de trouver un individu vidé de sa substantifique moelle j'ai appliqué la méthode (merci Yves) potasse et glycérine. Si ça n'a pas rendu translucide ça semble plus en adéquation avec ce que tu recherches.
On retrouve, si je ne m'abuse, les stries d'accroissement.
Je reste à l'affût d'autres individus.

Ph.

2-vues-en-COL-WEB.jpg (153.53 Kio) Vu 3364 fois

3-4WEB.jpg (186.76 Kio) Vu 3365 fois

[YVES50]

Bonjour Philippe,
Aaaahhh ! Sur le premier cliché, les ceintures d'élongation sont bien visibles.
Beau travail
Tu écris : K 5% - dessication - eau glycérinée
Donc, si je comprends bien, tu fais sécher la prép. dans la potasse (à l’eau ou à l’alcool ?)

[Buteo]

Bonjour Yves,
Partant de ce que tu m'avais indiqué j'ai fait ma sauce. Elle ne vaut que par le résultat qui répond en partie à ce que je souhaitais (une belle cellule bien vidée, ce qui est loin d'être le cas) et doit sans conteste être améliorée.

- goutte de prélèvement sans lamelle pour repérer les candidats
- isoler lesdits (sous bino, avec poil de blaireau)
- lamelle, observation, photos
- qq gttes de solution aqueuse 5% de soude (et non K comme indiquémême si les résultats doivent être similaires) sur 2 bords de la lamelle
- déshydrat° partielle, rajoût de soude
- une nuit en chambre humide
- déshydratat° partielle
- petite gtte d'eau pour pouvoir décoller la lamelle
- petite goutte de glycérine
- lamelle
Il y a sûrement moyen d' améliorer le procédé, je n'ai répondu qu'à des intuitions...tributaire des contigences quotidiennes.
Philippe

[YVES50]

Ave Ô Philippe !
Merci pour cette recette détaillée qui semble bien porter ses fruits.
Oui, la soude c'est Na... J'ai du KOH mais point de NaOH. Dilemme et quid

[Buteo]

Allez Yves le déconfinement est effectif : magasin de bricolage ou quincailler du coin.

[André]

Bonjour à tous, Philippe
merci pour ces photos complémentaires: une strie d'accroissement, une tumidité très discrète...je crois qu'il faut abandonner C.tumidum !
Par contre, pour le remplacer, je tombe chaque fois dans une impasse :
Clé de Lenzenweger :
En partant avec de fausses stries...cellules faiblement arquées, droites cylindriques dans la partie médiane... paroi lisse ....largeur maximale 10µm....impasse
Cellules plus larges que 10µm alors striées ...admettons...Apex plus étroit que le corps de la cellule...stries ponctuées ou très discrètes (non visibles?)...puis C.praelongum avec cellules largeur <25µm et apex récurvé ....impasse


Bref je n'ai rien à proposer !